VALORES TEÓRICOS:

Los resultados se obtuvieron del estudio multicéntrico prospectivo: Diagnosis of Preeclampsia by means of the Elecsys sFlt-1 Assay and the ELECSYS PIGF Assay (Roche study No. CIM RD000556/X06P006).16

Para definir los intervalos de referencia para el embarazo normal, se analizaron las muestras de 877 embarazadas normotensas obtenidas en 1685 consultas por 9 laboratorios europeos (Alemania, España, Austria, República Checa, Suiza). En todos los casos se trató de embarazos simples con resultados normales (p.ej. sin preeclampsia/síndrome HELLP, sin RCIU). Para cada muestra se determinaron paralelamente las concentraciones de sFlt-1 y PlGF y se calculó el cociente sFlt-1/PlGF.

Semanas de gestación: Definidas como semanas completas de embarazo desde el primer día de la última menstruación.

Se obtuvieron los resultados siguientes:

Percentiles del test Elecsys sFlt-1 (pg/mL)

Percentiles del test ELECSYS PIGF (pg/mL)

Cociente Elecsys sFlt-1/PlGF (percentiles)

Cada laboratorio debería comprobar si los intervalos de referencia pueden aplicarse a su grupo de pacientes y, en caso necesario, establecer sus propios valores.

USO PREVISTO:

Inmunoanálisis in vitro para la determinación cuantitativa del factor de crecimiento placentario (PlGF) en suero humano.

El test ELECSYS PIGF se emplea conjuntamente con el test Elecsys sFlt-1 para determinar el cociente sFlt-1/PlGF. Junto con otras informaciones diagnósticas y clínicas, la determinación del cociente sFlt-1/PlGF constituye una ayuda en el diagnóstico de la preeclampsia.

Además, en combinación con otras informaciones diagnósticas y clínicas, la determinación del cociente sFlt-1/PlGF ayuda en la predicción a corto plazo de la preeclampsia (diagnóstico de inclusión y exclusión) en embarazadas con sospecha de preeclampsia.

El presente ensayo está destinado a ser utilizado en combinación con otros parámetros a fin de evaluar el riesgo de preeclampsia de inicio precoz durante el primer trimestre del embarazo.

Este inmunoensayo de electroquimioluminiscencia (electrochemiluminescence immunoassay) ECLIA está previsto para el uso en inmunoanalizadores cobas e.

MEDIDAS DE PRECAUCIÓN Y ADVERTENCIAS:

Para el uso diagnóstico in vitro por los profesionales de la salud. Observe las medidas de precaución usuales para la manipulación de reactivos de laboratorio.

Residuos infecciosos o microbiológicos:

Advertencia: Manipule los residuos como material biológico potencialmente peligroso. Deseche los residuos de acuerdo con las instrucciones y procedimientos de laboratorio aceptados.

Peligros ambientales:

Aplique todas las normas locales de eliminación pertinentes para asegurar una eliminación segura.

Existe una ficha de datos de seguridad a disposición del usuario profesional que la solicite.

El presente estuche contiene componentes que han sido clasificados por la directiva CE No. 1272/2008 de la siguiente manera:

Atención

H317 Puede provocar una reacción alérgica en la piel.

Prevención:

P261 Evitar respirar el polvo/el humo/el gas/la niebla/los vapores/el aerosol.

P272 Las prendas de trabajo contaminadas no podrán sacarse del lugar de trabajo.

P280 Llevar guantes de protección.

Respuesta:

P333 + P313 En caso de irritación o erupción cutánea: Consultar a un médico.

P362 + P364 Quitar las prendas contaminadas y lavarlas antes de volver a usarlas.

Eliminación:

P501 Eliminar el contenido/el recipiente en una planta de eliminación de residuos aprobada.

Las indicaciones de seguridad del producto corresponden a los criterios del sistema globalmente armonizado de clasificación y etiquetado de productos químicos (GHS por sus siglas en inglés) válidas en la UE.

Contacto telefónico internacional: +49-621-7590

Evite la formación de espuma en reactivos y muestras de todo tipo (especímenes, calibradores y controles).

CONSERVACIÓN Y ESTABILIDAD:

Conservar a 2-8°C.

No congelar.

Conservar el cobas e pack en posición vertical para garantizar la disponibilidad total de las micropartículas durante la mezcla automática antes del uso.

DILUCIÓN:

No es necesaria debido al amplio intervalo de medición.

MATERIAL REQUERIDO ADICIONALMENTE (NO SUMINISTRADO):

• 05144701190, PlGF CalSet, para 4 x 1.0 mL

• 05341787190, PreciControl Multimarker para 6 x 2.0 mL

• Equipo usual de laboratorio

• Analizador cobas e

Materiales adicionales para los analizadores cobas e 402 y cobas e 801:

• 06908799190, ProCell II M, 2 x 2 L de solución del sistema

• 04880293190, CleanCell M, 2 x 2 L de solución de limpieza para la célula de medida

• 07485409001, Reservoir Cup, 8 recipientes para ProCell II M y CleanCell M

• 06908853190, PreClean II M, 2 x 2 L de solución de lavado

• 05694302001, Bandeja de Assay Tip/Assay Cup, 6 x 6 bandejas, cada una con 105 cubetas y 105 puntas de pipeta (3780 determinaciones), 3 cartones de residuos sólidos

• 07485425001, Liquid Flow Cleaning Cup, 2 recipientes para la solución de limpieza ISE Cleaning Solution/Elecsys SysClean para la unidad de detección Liquid Flow Cleaning Detection Unit

• 07485433001, PreWash Liquid Flow Cleaning Cup, 1 recipiente para la solución de limpieza ISE Cleaning Solution/Elecsys SysClean para la unidad de prelavado Liquid Flow Cleaning PreWash Unit

• 11298500316, ISE Cleaning Solution/Elecsys SysClean, 5 x 100 mL de solución de limpieza para el sistema

MATERIAL SUMINISTRADO:

Consultar la sección “Reactivos - Soluciones de trabajo” en cuanto a los reactivos suministrados.

CALIBRACIÓN:

Trazabilidad: El presente método ha sido estandarizado frente a un test comercial de PlGF que, a su vez, había sido estandarizado por pesaje frente a PlGF altamente purificado.

La curva máster predefinida es adaptada al analizador a través del CalSet correspondiente.

Intervalo de calibraciones: Efectuar la calibración una vez por lote con reactivos frescos de un cobas e pack registrado como máximo 24 horas antes en el analizador.

El intervalo de calibración puede ampliarse si el laboratorio asegura una verificación aceptable de la calibración.

Se recomienda repetir la calibración:

• después de 12 semanas si se trata del mismo lote de reactivos

• después de 28 días (si se emplea el mismo cobas e pack en el analizador)

• en caso necesario: por ejemplo, si los valores del control de calidad están fuera del intervalo definido

CONTROL DE CALIDAD:

Efectuar el control de calidad con PreciControl Multimarker.

Adicionalmente pueden emplearse otros controles apropiados.

Los controles de los diferentes intervalos de concentración deberían efectuarse junto con el test en determinaciones simples por lo menos 1 vez cada 24 horas, con cada cobas e pack y después de cada calibración.

Adaptar los intervalos y límites de control a los requisitos individuales del laboratorio. Los resultados obtenidos deben hallarse dentro de los límites definidos. Cada laboratorio debería establecer medidas correctivas a seguir en caso de obtener valores fuera del intervalo definido.

Si fuera necesario, repetir la medición de las muestras en cuestión.

Cumplir con las regulaciones gubernamentales y las normas locales de control de calidad pertinentes.

CÁLCULO:

El analizador calcula automáticamente la concentración de analito de cada muestra en pg/mL.

ESPECIFICIDAD ANALÍTICA:

Los anticuerpos monoclonales empleados en el test son altamente específicos del PlGF humano. Se han registrado las siguientes reactividades cruzadas:

INFORMACIÓN DEL SISTEMA:

Español:

Nombre abreviado: PLGF

ACN (código de aplicación): 10038

LÍMITES E INTERVALOS:

Intervalo de medición:

3-10000 pg/mL (definido por el límite de detección y el máximo de la curva máster). Los valores inferiores al límite de detección se indican como < 3 pg/mL. Los valores superiores al intervalo de medición se indican como > 10000 pg/mL.

Límites inferiores de medición:

Límite de Blanco, Límite de Detección y Límite de Cuantificación:

El Límite de Blanco, el Límite de Detección y el Límite de Cuantificación fueron determinados cumpliendo con los requerimientos EP17-A2 del Instituto de Estándares Clínicos y de Laboratorio (CLSI - Clinical and Laboratory Standards Institute).

El Límite de Blanco es el valor del percentil 95 obtenido a partir de n ≥ 60 mediciones de muestras libres de analito en varias series independientes. El Límite de Blanco corresponde a la concentración por debajo de la cual se encuentran, con una probabilidad del 95%, las muestras sin analito.

El Límite de Detección se determina basándose en el Límite de Blanco y en la desviación estándar de muestras de baja concentración. El Límite de Detección corresponde a la menor concentración de analito detectable (valor superior al Límite de Blanco con una probabilidad del 95%).

El Límite de Cuantificación es la menor concentración de analito cuya medición puede reproducirse con un coeficiente de variación intermedio para la precisión de ≤ 20%.

Se ha determinado utilizando muestras con una concentración baja de PlGF.

PRECISIÓN:

La precisión ha sido determinada mediante reactivos Elecsys, muestras y controles según un protocolo (EP05-A3) del CLSI (Clinical and Laboratory Standards Institute): 2 ciclos diarios por duplicado, cada uno durante 21 días (n= 84). Se obtuvieron los siguientes resultados:

b) PC = PreciControl

CARACTERÍSTICAS:

La preeclampsia (PE) es una complicación grave del embarazo caracterizada por hipertensión y proteinuria después de la 20.ª semana de gestación. Ocurre en el 3 al 5% de los embarazos y produce morbimortalidad substancial en la madre, el feto o el neonato. Las manifestaciones clínicas van desde formas ligeras hasta severas; la preeclampsia sigue siendo una de las causas principales de morbimortalidad maternofetal.1,2,3,4,5,6

Parece que la preeclampsia se debe a la liberación placentaria de factores angiogénicos que inducen una disfunción endotelial. En mujeres con preeclampsia están alteradas las concentraciones séricas del PIGF (factor de crecimiento placentario) y sFlt-1 (quinasa de tirosina soluble similar al FMS, también conocida como receptor 1 soluble de VEGF (factor de crecimiento vascular)). Además, las concentraciones circulantes de PIGF y sFlt-1 permiten diferenciar un embarazo normal de otro con preeclampsia incluso antes de que aparezcan los síntomas clínicos. En gestaciones normales, el factor proangiogénico PIGF aumenta durante los primeros dos trimestres para reducirse posteriormente a medida que el embarazo alcanza su término. Las concentraciones del factor antiangiogénico sFlt-1, en contra, permanecen estables durante las fases inicial e intermedia pero incrementan permanentemente hasta el término de la gestación. En las mujeres que desarrollan preeclampsia, las concentraciones de sFlt-1 son más altas y las concentraciones de PlGF más bajas que en un embarazo normal.7,8,9,10

El cociente sFlt-1/PlGF ha demostrado tener un mayor valor predictivo para la preeclampsia que la medición de cada parámetro por separado.

Además, parece constituir una herramienta fiable para distinguir entre diferentes tipos de hipertensión durante el embarazo. Adicionalmente, el cociente sFlt-1/PlGF tiene el potencial de convertirse en un parámetro pronóstico de la preeclampsia y de eventuales complicaciones de la madre y el feto relacionadas a esta enfermedad además de ser útil en la estratificación de riesgo y el manejo de la PE.5,11,12,13,14,15,16,17,18,19

En pacientes con signos y síntomas de preeclampsia, el cociente sFlt-1/PlGF resultó útil en la predicción a corto plazo de la enfermedad.17,18 Asimismo, el cociente sFlt-1/PlGF puede mejorar la predicción de la preeclampsia precoz en las mujeres que tengan factores de riesgo (incluyendo antecedentes de restricción del crecimiento intrauterino (RCIU); preeclampsia; eclampsia; el síndrome HELLP (hemólisis, enzimas hepáticas elevadas y trombocitopenia); diabetes pregestacional; ecografía Doppler anormal de la arteria uterina).20 En las mujeres nulíparas no seleccionadas con un embarazo único, un cribado efectuado en las semanas gestacionales ≈ 20, ≈ 28 y ≈ 36 con el cociente sFlt-1/PlGF ha permitido predecir el riesgo clínico de las manifestaciones más importantes de la preeclampsia (un cociente sFlt-1/PlGF ≤ 38 a las 36 semanas gestacionales ha dado un valor predictivo negativo de preeclampsia severa de más del 99%).21

Un cociente elevado de sFlt-1/PlGF se asocia a un embarazo más corto y un mayor riesgo de parto prematuro.22 El uso del cociente sFlt-1/PlGF influye en la decisión clínica sobre la hospitalización en una proporción considerable de mujeres con sospecha de preeclampsia.23 Un estudio económico demostró que la integración de la prueba sFlt-1/PlGF en la práctica clínica en el Reino Unido ha permitido ahorrar los gastos sanitarios reduciendo la hospitalización innecesaria de mujeres que presentaron un bajo riesgo de preeclampsia.24 El instituto británico NICE (National Institute for Health and Care Excellence) recomienda integrar el test Elecsys sFlt-1/PlGF en la evaluación clínica estándar y en el seguimiento clínico para ayudar a excluir el diagnóstico de preeclampsia en mujeres con sospecha de preeclampsia entre las semanas gestacionales 20 y 34+6.25

En el primer trimestre del embarazo, se han propuesto diferentes modelos de cribado que utilizan el PlGF como uno de los componentes para predecir el riesgo de una preeclampsia precoz.26,27,28,29,30,31

En resumen, la determinación de las concentraciones de PlGF y sFlt-1 por inmunoanálisis en sangre materna amplía las posibilidades diagnósticas de la preeclampsia que son la evaluación de los síntomas clínicos, la proteinuria y la ecografía Doppler de las arterias uterinas.5,6,13,15,16,32,33,34

El PlGF en enfermedades cardiovasculares: El PIGF puede ser detectado en bajos niveles en personas sanas que no están embarazadas. En pacientes con enfermedades cardiovasculares, niveles aumentados de PIGF pueden indicar la presencia de una aterosclerosis micro o macrovascular o una angiogénesis patológica. Adicionalmente, el PlGF ha demostrado predecir de forma independiente la morbimortalidad cardiovascular en pacientes con diabetes de tipo 1 y 2.35,36,37,38

SENSIBILIDAD Y ESPECIFICIDAD CLÍNICAS:

Ayuda en el diagnóstico de la preeclampsia:

Los resultados se obtuvieron del estudio multicéntrico prospectivo: Diagnosis of Preeclampsia by means of the Elecsys sFlt-1 assay and the ELECSYS PIGF assay (Roche study No. CIM RD000556/X06P006).16

En este estudio de casos y controles, las pruebas Elecsys sFlt-1 y ELECSYS PIGF se analizaron de forma paralela en las muestras de 468 embarazadas con resultados normales (sin preeclampsia/síndrome HELLP o RCIU) y 234 pacientes con preeclampsia/síndrome HELLP. Se tuvieron en cuenta exclusivamente embarazos simples. La preeclampsia se define como nueva aparición de hipertensión (presión sistólica sanguínea ≥ 140 mmHg o presión diastólica sanguínea ≥ 90 mmHg) y de proteinuria (> 0.3 g/24 horas o tira reactiva ≥ 1+ si no se obtuvo orina de 24 horas) pasada la 20.ª semana de gestación. Un embarazo con preeclampsia de inicio precoz está definido por la aparición de los signos clínicos antes de la semana 34 de embarazo. Se sugieren diferentes puntos de corte para la preeclampsia precoz y tardía.

Fase temprana de la gestación (semana 20+0 - semana 33+6).

Fase tardía de la gestación (semanas 34+0 - parto)

Ayuda a la predicción a corto plazo de la preeclampsia:

Los resultados se obtuvieron del estudio multicéntrico prospectivo: PROGNOSIS - un estudio multicéntrico, prospectivo, doble ciego no intervencionista que evalúa la predicción a corto plazo de preeclampsia/eclampsia/HELLP en gestantes con sospecha de preeclampsia (estudio de Roche, No. CIM RD000817).17

La obtención de muestras y resultados se efectuó por 30 laboratorios internacionales entre Diciembre de 2010 y Enero de 2014. En el estudio participaron 1273 embarazadas (semanas 24+0 días - 36+6 días) con sospecha clínica de preeclampsia y de ellas, 1050 mujeres se consideraron para los objetivos primarios del estudio (500 mujeres en la cohorte de desarrollo y 550 mujeres en la cohorte de validación). El único punto de corte establecido por el estudio PROGNOSIS para el cociente sFlt-1/PlGF fue 38:

• Cociente sFlt-1/PlGF ≤ 38: exclusión de preeclampsia para 1 semana.

• Cociente sFlt-1/PlGF > 38: inclusión de preeclampsia para 4 semanas.

En la cohorte de validación se obtuvieron los resultados indicados en las tablas siguientes:

c) VPN = valor predictivo negativo.

d) IC = intervalo de confianza.

e) VPP = valor predictivo positivo

El valor predictivo negativo ha sido calculado también para descartar la preeclampsia a 2, 3 y 4 semanas después del análisis como criterio secundario del estudio PROGNOSIS.18

Cociente sFlt-1/PlGF y trastornos maternofetales relacionados:

Los resultados del análisis a posteriori del estudio PROGNOSIS demostraron que un punto de corte de 38 para el cociente sFlt-1/PlGF permite predecir un acontecimiento clínico combinado de preeclampsia, eclampsia o síndrome HELLP o resultados adversos para la madres o el feto.17

En la cohorte de validación se obtuvieron los resultados indicados en las tablas siguientes:

Relación del cociente sFlt-1/PlGF y tiempo hasta el parto:

Un análisis secundario del estudio PROGNOSIS demostró que un cociente sFlt-1/PlGF superior a 38 se asocia con un embarazo más corto y un mayor riesgo de parto prematuro en la fase gestacional precoz y tardía sin y con preeclampsia.22

Las mujeres con un cociente sFlt-1/PlGF superior a 38 (n= 250) tenían una probabilidad 2.9 veces mayor de parto inminente (parto en el día de la prueba) y un embarazo más corto que las mujeres con un cociente sFlt-1/PlGF igual o inferior a 38, independientemente de si desarrollaron o no preeclampsia.22

El número de días restantes del embarazo desde el día de la prueba fue de 17 días (mediana; rango intercuartílico (RIC)): 10-26 días) para mujeres con un cociente sFlt-1/PlGF > 38 frente a 51 días (mediana; RIC: 30-75 días) para mujeres con un cociente sFlt-1/PlGF ≤ 38.22

La tasa de nacimientos prematuros en el grupo de mujeres con un cociente sFlt-1/PlGF > 38 fue del 71.2% (131/184 mujeres) frente al 17.8% en el grupo con un cociente sFlt-1/PlGF ≤ 38 (118/664 mujeres).22

Evaluación del riesgo de desarrollar una preeclampsia en el primer trimestre:

Un estudio efectuado por Tsiakkas et al.26 incluyó a 40212 mujeres con embarazos simples cribadas en las semanas gestacionales 11-13 con características maternas y PlGF. Se obtuvieron los siguientes resultados:

Los siguientes resultados se obtuvieron de otro estudio, efectuado por Akolekar et al.27, quien evaluó a 58884 mujeres con embarazos simples, cribadas en las semanas gestacionales 11-13 usando características maternas más el índice de pulsatilidad de la arteria uterina (IP), presión arterial media (PAM) y el PlGF.

Se obtuvieron resultados similares con otros estudios que utilizaron el PlGF como uno de los parámetros para evaluar el riesgo de preeclampsia.28,29,30,31

LIMITACIONES DEL ANÁLISIS - INTERFERENCIAS:

Se analizaron los efectos de las siguientes sustancias endógenas y los siguientes compuestos farmacéuticos sobre el funcionamiento del test sin que se hayan observado interferencias.

Sustancias endógenas:

Criterio: Para concentraciones de entre 3-50 pg/mL se obtuvo una desviación de ≤ ± 10 pg/mL. Para concentraciones > 50 pg/mL se obtuvo una desviación de ≤ ± 15%.

En pacientes en tratamiento con altas dosis de biotina (> 5 mg/día), no recoger la muestra antes de transcurridas como mínimo 8 horas tras la última administración.

No se ha registrado el efecto prozona (high dose hook) con concentraciones de PlGF de hasta 100000 pg/mL.

Compuestos farmacéuticos:

Se analizaron in vitro 16 fármacos de uso extendido De éstos, sólo la acetilcisteína, en dosis terapéuticas, presentó una interferencia con el test (valores reducidos de PlGF).

En casos aislados pueden presentarse interferencias por títulos extremadamente altos de anticuerpos dirigidos contra anticuerpos específicos del analito, la estreptavidina o el rutenio. Estos efectos se han minimizado gracias a un adecuado diseño del test.

Para el diagnóstico, los resultados del test siempre deben interpretarse teniendo en cuenta la anamnesis del paciente, la exploración clínica así como los resultados de otros exámenes.

SÍMBOLOS:

Roche Diagnostics utiliza los siguientes símbolos y signos adicionalmente a los indicados en la norma ISO 15223-1 (para los EE.UU.: consulte dialog.roche.com para la definición de los símbolos usados):

La barra del margen indica suplementos, eliminaciones o cambios.

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OBTENCIÓN Y PREPARACIÓN DE LAS MUESTRAS:

Sólo se ha analizado y considerado apto el tipo de muestras aquí indicado.

Suero recogido en tubos estándar de muestra o en tubos que contienen gel de separación.

Después de la centrifugación, conservar la muestra de suero separada a 2-8°C como máximo 48 horas, también en caso de transportarla. Analizar las muestras enseguida o congelarlas a -20°C (± 5°C) o a temperaturas inferiores durante como máximo 6 meses. Congelar sólo una vez.

Los tipos de muestra aquí indicados fueron analizados con tubos de recogida de muestras seleccionados, comercializados en el momento de efectuar el análisis, lo cual significa que no fueron analizados todos los tubos de todos los fabricantes. Los sistemas de recogida de muestras de diversos fabricantes pueden contener diferentes materiales que, en ciertos casos, pueden llegar a afectar los resultados de los análisis. Si las muestras se procesan en tubos primarios (sistemas de recogida de muestras), seguir las instrucciones del fabricante de tubos.

Centrifugar las muestras que contienen precipitado antes de realizar el ensayo.

No emplear muestras inactivadas por calor.

No utilizar muestras ni controles estabilizados con azida.

Se debe garantizar una temperatura de 20-25°C para la medición de muestras y calibradores.

Para evitar posibles efectos de evaporación, determinar las muestras y los calibradores que se sitúan en los analizadores dentro de un lapso de 2 horas.

PREPARACIÓN DE LOS REACTIVOS:

Los reactivos incluidos en el kit están listos para el uso y forman una unidad inseparable.

La información necesaria para el correcto funcionamiento está disponible a través de cobas link.

COMPARACIÓN DE MÉTODOS:

a) Una comparación entre el test ELECSYS PIGF, 07027648190 (analizador cobas e 801; y) y el test ELECSYS PIGF, 05144671190 (analizador cobas e 601; x) generó las siguientes correlaciones (en pg/mL):

Número de muestras medidas: 135

Las concentraciones de las muestras se situaron entre 5.08 y 9505 pg/mL.

b) Una comparación entre el test ELECSYS PIGF, 07027648190 (analizador cobas e 402; y) y el test ELECSYS PIGF, 07027648190 (analizador cobas e 801; x) generó las siguientes correlaciones (en pg/mL):

Número de muestras medidas: 144

Las concentraciones de las muestras se situaron entre 3.71 y 9567 pg/mL.

DATOS ESPECÍFICOS DEL FUNCIONAMIENTO DEL TEST:

A continuación, se indican los datos representativos del funcionamiento de los analizadores. Los resultados de cada laboratorio en particular pueden diferir de estos valores.

PRINCIPIO DEL TEST:

Principio sándwich. Duración total del test: 18 minutos.

• 1.ª Incubación: 30 μL de muestra, un anticuerpo monoclonal biotinilado anti-PlGF y un anticuerpo monoclonal anti-PlGF marcado con quelato de rutenioa) forman un complejo sándwich.

• 2.ª Incubación: después de incorporar las micropartículas recubiertas de estreptavidina, el complejo formado se fija a la fase sólida por interacción entre la biotina y la estreptavidina.

• La mezcla de reacción es trasladada a la célula de medida donde, por magnetismo, las micropartículas se fijan a la superficie del electrodo. Los elementos no fijados se eliminan posteriormente con ProCell II M. Al aplicar una corriente eléctrica controlada se produce una reacción quimioluminiscente cuya emisión de luz se mide con un fotomultiplicador.

• Los resultados se determinan mediante una curva de calibración generada específicamente para el instrumento a partir de una calibración a 2 puntos y una curva máster suministrada a través de cobas link.

a) Quelato Tris (2,2’-bipiridina) rutenio(II) (Ru(bpy))

REACTIVOS - SOLUCIONES DE TRABAJO:

El cobas e pack está etiquetado como PLGF.

M Micropartículas recubiertas de estreptavidina, 1 frasco, 5.8 mL:

Micropartículas recubiertas de estreptavidina: 0.72 mg/mL, conservante.

R1 Anticuerpo anti-PlGF~biotina, 1 frasco, 7.2 mL:

Anticuerpo monoclonal biotinilado anti-PlGF (ratón) 0.6 mg/L; tampón fosfato 50 mmol/L, pH 6.0; conservante.

R2 Anticuerpo anti-PlGF~Ru(bpy), 1 frasco, 7.2 mL:

Anticuerpo monoclonal anti-PlGF (ratón) marcado con quelato de rutenio 4.0 mg/L; tampón fosfato 50 mmol/L, pH 6.0; conservante.

REALIZACIÓN DEL TEST:

Para garantizar el funcionamiento óptimo del test, observe las instrucciones de la presente metódica referentes al analizador empleado. Consulte el manual del operador apropiado para obtener las instrucciones de ensayo específicas del analizador.

Las micropartículas se mezclan automáticamente antes del uso.

Colocar el cobas e pack refrigerado (a 2-8°C) en el gestor de reactivos (reagent manager). Evitar la formación de espuma. El analizador realiza automáticamente los procesos de atemperar, abrir y tapar el cobas e pack.

REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS:

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El presente producto y sus porciones han sido elaborados bajo licencia de ThromboGenics y Geymonat, bajo la Patente Europea No. 550519, la patente de los EE.UU. No. 7314734, así como bajo equivalentes extranjeros de estos derechos de patente. En los EE.UU. se encuentran en trámite otras patentes adicionales.

Para más información acerca de los componentes, consultar el manual del operador del analizador, las hojas de aplicación, la información de producto y las metódicas correspondientes (disponibles en su país).

En la presente metódica se emplea como separador decimal un punto para distinguir la parte entera de la parte fraccionaria de un número decimal. No se utilizan separadores de millares.

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